Biologický mikroskop na objeme tkanivového bloku
Biologický mikroskop s kondenzorom môže pohybovať kondenzorom nahor a nadol, aby bol jeho jas mierny, a tiež môže meniť apertúru variabilného analyzátora svetla, aby sa dosiahol mierny jas 9b. Ak je svetlo na slnku, kondenzor sa dá vhodne zdvihnúť a apertúra premenlivého optického šumu sa dá primerane zväčšiť. Ak je svetlo príliš silné, možno kondenzor vhodne znížiť a primerane zmenšiť otvor križovatky. Ak sa aj v tomto prípade cítite oslňujúco, môžete si vybrať vhodný filter a umiestniť ho na držiak pod kondenzátor. Tento tussah môže získať jas, ktorý vás uspokojí. Samozrejme je potrebné po určitej dobe praxe nadobudnúť skúsenosti s nastavovaním hornej a dolnej polohy kondenzora pre zmenu veľkosti apertúry optického odčítania a výber vhodných filtrov.
Veľmi dôležitým problémom biomikroskopu je, že s obsahom 65 prvkov v každej časti po lyofilizácii a zaliatí živicou (FD) a lyofilizácii sa musí zaobchádzať opatrne, aby sa nepoškodili bunky, ktoré sa majú pozorovať a analyzovať. Pretože röntgenová mikroanalýza zahŕňa nielen veľa krokov, ale aj veľa nákladov, je veľmi poľutovaniahodné vyvodiť nesprávny záver, ak sú analyzované bunky poškodené alebo mŕtve bunky po dlhodobej a viacstupňovej liečbe. Napríklad bunky myokardu oddelené pôsobením kolagenázy majú dve formy, jedna je dlhá tyčinka a druhá je okrúhla. Posledne menovaná je umierajúca bunka, ktorá je poškodená počas separácie buniek.
Obsah a distribúcia elektrolytov v týchto dvoch druhoch buniek sú pod biologickým mikroskopom veľmi odlišné. Na je veľmi vysoká a K je veľmi nízka v okrúhlych myokardiálnych bunkách a koncentrácia ca v lineárnych dendritoch je veľmi vysoká. V porovnaní s inými analytickými metódami je dokázané, že vysoké Na a nízke K v kruhových bunkách a vysoké ca v mitochondriách sú výsledkom poškodenia bunkovej membrány počas bunkovej separácie. Metóda fixácie buniek a tkanív za studena často spočíva v ich upevnení najskôr ochladením a potom v uložení do tekutého dusíka. Pre konzervačný efekt je veľmi dôležitá fixácia kalením. Živé bunky alebo čerstvé tkanivá sú bohaté na vodu. Pri ochladzovaní sa často stáva, že časti buniek alebo tkanív, ktoré sú v priamom kontakte s kryoprotektantmi (najmä pri ochladzovaní tekutým dusíkom), sa najskôr zmrazia a zafixujú, čím sa vytvorí „škrupina“, ktorá bráni zmrazeniu a fixácii centrálnej časť buniek. Preto sa pri vykonávaní röntgenovej mikroanalýzy často zistí, že v strede väčších buniek sú ľadové kryštály. Aby sa tomu zabránilo, používa sa ako chladivo látka s teplotou topenia vyššou ako má kvapalný dusík, ale s teplotou sušenia nižšou ako 806 °C. Existuje veľa takýchto látok, ale najľahšie dostupný je koncentrovaný propán (bod varu-42．120c, bod topenia-187．10c, molekulová hmotnosť-44.1), ktorý má najrýchlejšia rýchlosť chladenia. Jeho nevýhodou je ale horľavosť.
Biologický mikroskop dokáže nasadiť svalové vlákno na špeciálny rám a keď sa svalové vlákno stiahne do určitej fázy a je potrebné ho zafixovať, tryska sa okamžite spustí, takže tekutý propán sa nastrieka na svalové vlákno, aby sa uhasilo a zafixovalo. to. Potom sa svalové vlákna vyberú spolu so stojanom a vložia sa do tekutého dusíka. Ak sú krvinky alebo oddelené bunky fixované, najprv odstreďte pri nízkej rýchlosti, aby sa bunky skoncentrovali, preneste bunky do striebornej malej skúmavky s dobrou tepelnou vodivosťou a vložte malú skúmavku do tekutého propánu na zmrazenie a fixáciu. Pri fixácii pankreasu potkanov v Hallovom laboratóriu boli dva oceľové bloky vopred ochladené tekutým héliom (alebo tekutým dusíkom) a dva medené bloky boli umiestnené pred a za pankreas pomocou klieští, takže tety boli uhasené a fixované. Tkanivo alebo bunky môžu byť skladované po dlhú dobu po ochladení a fixácii a prenesení do tekutého dusíka.
